|
| ||||||
|
Genetic Center |
версия для печати Генетика неонатальных заболеваний легкихGenetic influences and neonatal lung diseaseMikko Hallman, Ritva Haataja Seminars of Neonatology (2003) 8, 19-27 Department of Pediatrics and Biocenter Oulu, University of Oulu, Finland, mikko.hallman@oulu.fi
ВведениеСогласно имеющимся доказательствам восприимчивость к бронхолегочной дисплазии (БЛД) – это влияние большого количества факторов. Они включают: степень недоношенности, тяжесть респираторного дистресс синдрома (РДС), потребность в искусственной вентиляции легких (ИВЛ) или насыщении кислородом, и наличие конкурирующих заболеваний (1). Основной фактор риска для РДС и БЛД - это степень недоношенности, непосредственная причина РДС – неадекватная функция альвеолярного сурфактанта. У недоношенных лабораторных животных, при удлинении срока гестации, имеющих более устойчивый сурфактантный пул, имелась предрасположенность к неонатальным легочным заболеваниям. Например, у кроликов при пролонгировании беременности, риск РДС составлял 4-5 %. У новорожденных гестационный возраст 25-36 недель считается связанным с риском РДС и составляет 25-30% при неблагополучно протекающей беременности. У новорожденных чаще, чем у лабораторных животных, РДС связан с патологией беременности. Генетические различия между расами и генетически гомогенными популяциями значительны. Многие тысячи генов, вовлеченных в процесс неонатальной легочной адаптации, показывают генетические различия, что, возможно, повышает восприимчивость к заболеваниям. В дополнение можно сказать, что мутации некоторых генов являются причиной тяжелых респираторных заболеваний. В данной статье по неонатальным легочным заболеваниям показана доля генетических различий в сурфактантных протеинах при РДС.Эпидемиологические и семейные тенденции, ведущие к РДСМужской пол является фактором риска по РДС (2,3). Недоношенные младенцы афро-американской популяции имеют мало случаев РДС или менее тяжелое течение РДС, чем новорожденные кавказоидного происхождения (3,4). Материнский диабет или асфиксия при рождении связаны с повышенным риском РДС (5), особенно при низком или высоком риске преэклампсии (6,7). У глубоко недоношенных детей, с урогенитальной инфекцией, имеющих дифференциацию сурфактантной системы, снижаются случаи РДС. Урогенитальная инфекция также связана с БЛД или острым РДС, как причина пневмонии при рождении (8,9). Первый ребенок из двойни имеет меньший риск РДС, чем второй (10), также антенатальные глюкокортикоиды снижают частоту и тяжесть РДС, но не БЛД (11). Кроме того, РДС является хорошо известным синдромом, как относящийся к спектру активных заболеваний. У некоторых недоношенных детей, РДС часто манифестирует как кардио-респираторная недостаточность, связанная с дальнейшим развитием БЛД. Практически доношенные новорожденные имеют, с одной стороны, стабильную грудную клетку и поддерживают адекватную вентиляцию, вопреки наличию умеренной сурфактантной недостаточности. Клинически установлена зависимость РДС от срока гестации и причины преждевременных родов. Наследственная характеристика сложна и генетическая восприимчивость может быть ограничена некоторой частью популяции новорожденных с РДС. Недавние исследования подтвердили предположения о семейной тенденции и наследственности РДС. Повышенный возвратный риск для сибсов как при РДС, так и при малом весе при рождении хорошо известен (12). А по материнскому анамнезу, можно разделить детей на группы с высоким или низким риском РДС по срокам его возникновения (13). Кроме того, возвратные риски по РДС более низки у полусибов по отцу, чем у полусибсов по матери или у полных сибсов (14). Семейная предрасположенность может быть не только генетической этиологии, но допускается воздействие окружающих факторов. Небольшое исследование 31 пары двоен выявило тенденцию к высокой конкордантности РДС у монозиготных пар по сравнению с дизиготными, некоторые из дизиготных пар были разнополыми (16).Генетическое происхождение РДСПодходящие генные кандидатыНедавние исследования 38 случаев РДС и 22 случаев в контрольной группе, предполагают связь лейкоцитарного антигена с РДС чувствительными генами (19), но это данные еще требуют подтверждения. Число генов, необходимых для неонатальной адаптации, достаточно велико и многие из них могут напрямую или косвенно влиять на риск РДС через средовые или конституциональные факторы. Существует несколько функциональных категорий этого порядка:во-первых, все энзимы и структурные компоненты нуждаются в биосинтезе, внутриклеточном транспорте и секреции сурфактантных липидов. Мутации, воздействующие на сурфактантные липиды, могут быть причиной мультиорганной патологии. Сурфактантная система может быть поражена при лизосомных болезнях. Сурфактантный протеин SP-B образовывается в результате протеолитических процессов из проSP-B в гидрофобном слое. Он состоит из перемежающихся катионов аминокислот и 6 цистеинов в форме 3 дисульфидных мостиков. SP-B улучшает сурфактантную активность повышая сурфактантную адсорбцию и поверхностную стабильность сурфактантных фосфолипидов (26). Это критическая роль во внутриклеточном процессе сурфактантного комплекса. В частности, при отсутствии SP-B у мышей липидно-протеиновый комплекс секретируется 2 типом альвеолярных клеток, не содержащих зрелого SP-C и не являясь поверхностно-активным 27). Зрелый SP-C гидрофобный протеолипид - внутриклеточно протеолитически продуцируется из пропротеина (28). Хотя дефицит SP-C у мышей различен и выжившие взрослые особи бывают без явных легочных расстройств, их легкие имеют сниженную сосудистую эластичность (29). SP-C играет роль в стабилизации сурфактанта при снижении легочных объемов и может также играть роль во внутриклеточном продуцировании сурфактантного комплекса. Сурфактант SP-D это коллектин, состоящий из фосфотидилинозитола и нескольких патоген-связанных молекулярных комплексов, влияющих на врожденный иммунный ответ. При SP-D дефиците альвеолярного сурфактанта у мышей легочная архитектоника изменяется и животные становятся чувствительными к специфическим инфекциям (30-32). Третья категория касается дифференциации альвеолярной ткани. Онтогенез сурфактантного комплекса и дифференциация альвеолярных клеток контролируется факторами роста и гормонами, что связано с наличием в сурфактантной системе специфических рецепторов, внутриклеточных сигнальных молекул факторов ядерной транскрипции (33,34). Аналогичные регуляторный процессы контролируют дифференциацию других функций в организме. Генные варианты, влияющие на дифференциацию сурфактантной системы могут иметь множество последствий во многих органах. Наконец, функциональные вещества не только сурфактантной системы влияют на респираторную адаптацию. Они включают в себя протеины, как катализаторы ионного транспорта через альвеолярный эпителий, факторы, влияющие на рост дыхательных путей, механизмы, контролирующие легочный кровоток и факторы первичного воспалительного ответа (37). Сурфактант SP-A кодирован двумя тесно сцепленными высокополиморфными генами (SP-A1 и SP-A2) на 10 хромосоме в районе q22-q23.Четыре аллели SP-A1 и пять аллелей SP-A2 встречаются со средней частотой (финская популяция),тогда как другие 30 аллелей обнаруживаются гораздо реже (38-40).SP-B ген локализован в хромосоме 2 p12-p11.2. известно несколько общих вариантов SP-B гена, экзон 4 - полиморфный и может влиять на порядок аминокислот, а также на согласование порядка в N-связи гликозидов в N-терминальном проSР-B (42-42).SP- С ген локализован на коротком плече 8 хромосомы.SP-D ген локализуется на 10 хромосоме в районе q22-q23 рядом с генами сурфактанта SP-A 46,47).SP-Aи SP-B варианты как гены предрасположенности к РДС Были изучены генные варианты в афро-американской, кавказоидной и финской популяциях (42,43,48-53). Исследования в финской популяции выявили особенности, касающиеся этнической гетерогенности и расовых различий в генных частотах (54). Очевидным при исследовании популяций становится то, что большинство главных аллелей гена SP-A - это аллели высокого риска РДС (43,48-53). Различия и несоответствия в исследованиях могут быть связаны с расовыми и этническими особенностями в патогенезе заболевания и частоте аллелей или другими не обнаруженными факторами. Различные исследования, используемые в финской популяции, дали высокоинформативные результаты. В первом исследовании, в каждом из 88 случаев рассматривали гестационный возраст, роды и антенатальную профилактику стероидами (51,43). Исследования были направлены на выявление прямой связи между SP-A и РДС. Во втором исследовании 688 недоношенных детей было относительно показано, что SP-A и SP-B интерактивно связаны с риском РДС. Аллели 6 А2 и 1 А (гена SP-A) связаны с повышением, а аллели 6 А3 со снижением риска РДС. Эти связи ограничены SP-B (le131Thr) генотипом вместе со степенью недоношенности (43). Связь между SP-A генами и РДС была практически явной среди очень недоношенных ( срок беременности <32 недель ) новорожденных, несущих гомозиготный фенотип SP-B ( Thr\Thr ). В третьем исследовании было проведено семейное обследование с использованием трансмиссионно неуравновешенного теста. В этом исследовании SP-A аллелей и генотипов, выявлены и установлены генетические основы чувствительности к РДС и «гипернормальный» фенотип, защищающий новорожденных от РДС (52). Кроме того, еще не установлена до конца роль предрасполагающих факторов аллелей высокого риска РДС или аллелей снижающих риск РДС. Другие исследования ограничились изучением двоен с известной зиготностью. Это исследование комбинировало традиционное исследование двоен и генный анализ. Среди одного миллиона финских новорожденных были выявлены случаи близнецовых пар одного пола где, по крайней мере один из новорожденных являлся пораженным (РДС). ДНК этих близнецов была проанализирована на SP-A и SP-B аллели и зиготность была верифицирована использованием нескольких полиморфизмов. Из 266 близнецовых пар, у 201 был диагностирован РДС (76%). Степень конкордантности между моно- и дизиготными парами была 0,55 и 0,48 , соответственно (55). Отсутствие статически значимой конкордантности между моно- и дизиготными двойнями, предполагает недостаточность прямого генетического влияния на РДС в этой популяции. Однако аллели и генотипы Il 131 Thr обнаруживают существенно высокую свзь с РДС. В группе с РДС был представлен Thr аллель, а в группе без РДС- Ile аллель. Условно логический регрессионный анализ далее подтвердил этот результат (Р=0,003) (55,56). Ile131Thr была у первого ребенка из двойни и отсутствовала у его сибса из двойни.SP-A и SP-В протеины могут быть связаны с РДС. Поскольку неонатальный РДС волнует всех, недавние исследования дали частичный ответ на вопрос -почему некоторые новорожденные чувствительны к РДС, несмотря на стероидную профилактику, а другие устойчивы при глубокой степени недоношенности.Было бы логично предположить, что генотип связан с риском РДС или устойчивостью к этому заболеванию. Идея, что специфический сурфактантный белковый генотип может быть связан как с врожденной чувствительностью, так и с устойчивостью к РДС, кажется противоестественной. Сурфактантные белки служат мишенью для гормонов и факторов роста, которые регулируют их дифференциацию. Гормоны и \или факторы роста уменьшают или повышают экспрессию сурфактантных белков, управляемый эффект зависит от срока гестации (33,57). Уровни гормонов и факторов роста зависят от этиологии преждевременного рождения. В заключение следует отметить, что степень ответственности гормонов и других факторов может быть ограничена специфическим SPA-генотипом (41,58). Исследования связи между генами и другими факторами это только первый шаг в понимании актуальной функции различных вариантов генов.Варианты сурфактантных белков в воспалительных легочных заболеванияхРеспираторные болезни, манифестирующие вскоре после рождения ,могут быть связаны с нарушением процесса рождения или с проблемами адаптации внешнего дыхания. В случае рождения, цельность иммунного ответа и устойчивость к инфекциями и токсическим продуктам (особенно оксидантам) меняется. Регуляция врожденного ответа, роста и респираторной функции взаимовыгодна. Несколько генов, экспрессируемые в альвеолярной ткани, играют несколько функций. Предположение, что сурфактантные белки некогда считались специфичными продуктами альвеолярных клеток, чья функция была ограничена поддержанием альвеолярной стабильности, еще можно опровергнуть. Так как роль легких в переносе кислорода зависит от врожденных функций нескольких сотен, если не тысяч генов, то различия в этом множестве генов должны быть исследованы.Согласно недавним сообщениям гены белковых суфрактантов могут быть ассоциированы и РДС у взрослых, где результатом являются пневмонии или хронические обструктивные легочные заболевания 59,60). Аллели суфрактантных белков могут влиять на степень риска различных легочных заболеваний в возрастных группах от младенцев до пожилых пациентов.SP-A и SP-D генотипы вовлечены в формирование устойчивости легких и воздушных путей к серьезным вирусным, бактериальным и грибковым инфекциям (21,61). SP-A и SP-D играют значительную роль в локальной легочной защите и аллельные вариации этих генов могут быть связаны с инфекционными легочными заболеваниями (47,48,62). Специфический набор генотипов содержит варианты сегментов кодированных в локусе, что может критическим для врожденного ответа. Это включает карбогидрат связывающую область (62), коллагеновую область (62) и близколежащую амино-терминально-цистеиновую область (47), необходимых для антивирусной защиты (21). Интересно, что аллели SP-A и SP-D связаны с легочными и воздушными инфекциями в раннем младенчестве. В течение этого периода клональный иммунитет еще развивается и устойчивость против инфекций может критически зависеть от врожденного иммунитета. Четкие связи были найдены между полиморфизмом коллектинов и тяжелыми респираторными синтициально-вирусными (РСВ) бронхиолитами у младенцев. Случаи этих заболеваний и контрольной группы были рассмотрены с исслдованием различных факторов: роды, гестационный возраст и анамнез респираторного заболевания. При обзоре основных аллельных ассоциаций было отмечено, что позиции аминокислоты 223 для SP-А2 гена (62) и 11 для гена SP-D (47) связаны с РСВ инфекциями новорожденных. Так, например, выявление генетически предрасполагающих факторов поможет выявить пациентов с тяжелым бронхиолитом новорожденных, вызванным респираторно-синтициальным вирусом (47,62). Новорожденные с высоким риском могут получать специфическую иммунопрофилактику и иммунотерапию, что усиливает врожденный иммунный ответ. Редкие генетические болезни, связанные с суфрактантными протеинами. Было выявлено отсутствие сурфактанта SP-В в результате редких мутаций, которые явились причиной прогрессирующего респираторного заболевания (66,68). Фенотипическая гетерогенность этих новорожденных предполагала различную степень SP-В дефицита или вовлечение других генетических факторов в этот процесс. Новорожденные с этим синдромом могут классифицироваться как имеющие врожденный альвеолярный протеиноз и развивают респираторный дистресс с первых часов рождения. Это заболевание имеет прогрессирующее течение в период новорожденности. Легочная трансплантация является наиболее оптимальным способом лечения в этом случае. Патоморфологические анализы обнаруживают ускоренную десквамацию легочного эпителия с аккумуляцией белкового материала в альвеолы. Не считая отсутствия сурфактанта SP-В патоморфология альвеол демонстрирует высокий уровень сурфактанта SP-A, дефицит SP-C и аномально представленный протеин проSP-C. Исследования специфически генетических дефектов у пробандов и родственников необходимо для подтверждения диагностики. Гетерозиготное носительство мутантных SP-В делеций может подтверждать предрасположенность к респираторным заболеваниям. Были недавно выявлены сплайсинг-мутации гена SP-C у новорожденных и их родственников (69). Аналогичные доминантные мутации были выявлены у 11 из 34 младенцев с хроническими легочными заболеваниями неясной этиологии. Вся индивидуальная недостаточность аномального протеина проSP-C у некоторых из них имеется de novo, а у других является семейной мутацией (70). Другие большие семейные разновидности, включая взрослых с десквамативными и неспецифическими интерстициальными пневмониями (форма семейного легочного фиброза) и детей с клеточными неспецифическими интерстициальными пневмониями были охарактеризованы как доминантные мутации карбокси-терминального проSP-C (71). Нарушения формирования структуры протеина SP-C могут быть ответственны за тяжелые часто вариабельные симптомы легочных заболеваний.Бронхолегочная диасплазия: новые спорыКак обсуждалось Jobe and Bancalari (1), генетические факторы возможно вызывают БЛД, и данные молекулярных генетиков по БЛД еще будут опубликованы. В настоящее время диагноз часто ставится патоморфологически. Недавно было представлено модифицированное клиническое определение БЛД основанное на точном гестационном возрасте, т.е. БЛД возникает через 28 дней после рождения и/или через 36 недель после зачатия. У школьников родившихся с выраженной недоношенностью и РДС, часто отмечается субнормальная функция легких, не считая случаев БЛД (72). Патоморфологические находки при БЛД демонстрируют остановку альвеолярного развития, выявляют дефект в расположении вторичных крист и дефект в васкуляризации альвеолярной ткани (73,74). В прошлом достаточно часто были описаны фиброз и дисплазия дыхательных путей (75). С одной стороны многие младенцы, развившие БЛД демонстрируют ранний воспалительный ответ, тогда как другие показывают серьезные или рекуррентные инфекции дыхательных путей (76,77). Согласно современным представлениям, число генов может аддитивно либо синергистически способствовать повреждению ткани или наоборот являться защитой этого повреждения. В дополнение к этому конституциональные и генетические факторы могут тесно взаимодействовать с внешнесредовыми факторами ( практика неонатального ведения, антенатальные факторы, приводящие к преждевременным родам ). Установление связей аллелей с предрасположенностью к тяжелой БЛД явно свидетельствуют о важной роли генов в патогенезе заболеваний. Статистическое отсутствие такой связи, тем не менее, не исключает ее наличия. Все четыре суфрактантных белка и многие другие гены, вовлеченные в регуляцию, дифференциацию, рост и альвеоляризацию могут оказывать влияние на развитие этой патологии. Наиболее вероятными кандитами являются гены с мультифакториальными функциями. К ним относятся гены кодирующие протеин SP-D (как антиоксидант, противовоспалительный агент, который регулирует суфрактантный гомеостаз и аллельную чувствительность и недостаток которого формирует эмфизематозный фенотип), SP-В ( отвечающий за внутриклеточный транспорт сурфрактанта, его поверхностную активность, формирование активного и врожденного иммунитета и возможность ионного транспорта. SP-A (регулирует поверхностную активность, чувствительность к респираторным инфекциям, формирует врожденный иммунитет и аллельную гиперчувствительность) и сосудистый эндотелиальный фактор роста, отвечающий за формирование легочных альвеол и дифференцировку легочного эпителия. Экспериментальные модели БЛД являются существенными для глубокого понимания функциональной важности.В будущемНесколько вариантов сурфактантных белков, многие из которых связаны с легочными заболеваниями, к настоящему времени достаточно хорошо описаны. РДС изучалось более интенсивно. Определены наиболее важные варианты легочных коллектинов этих белков, связанные с легочными в воздушно-капельными инфекциями в раннем младенчестве. Это только первый шаг к пониманию генетического воздействия на чувствительность к легочным заболеваниям. Дистальные отделы легких часто подвержены воздействию очень редких рецессивных делеционных мутаций гена SP-В и редких доминантных мутаций, связанных с абберантными протеинами SP-В. Приобретенные легочные заболевания, особенно БЛД, являются многофакторными заболеваниями с преимущественно генетическим влиянием. Для лучшего понимания точных биологических механизмов и фенотипической важности необходимо интенсивное исследование большого числа аллельных вариантов, включая функциональные исследования с использованием методов in vitro и модели животных. Применение каждого молекулярного метода для патогенеза, диагностики и профилактики сможет быстрее приблизить наступление новой эры в неонатальной пульмонологии.References 1. Jobe AH, Bancalari E. Bronchopulmonary dysplasia. Am J Respir Grit Care Med 2001; 163:1723-9. 2. Khoury MJ, Marks JS, McCarthy BJ, Zaro SM. Factors affecting the sex differential in neonatal mortality: the role of respiratory distress syndrome. Am J Obstet Gynecol 1985;151:777-82. 3. Farrelt PM, Wood RE. Epidemiology of hyaline membrane disease in the United States: analysis of national mortality statistics. Pediatrics 1976;58:167-76. 4. Hulsey TC, Alexander GR, Robillard PY, Annibale DJ, Keenan A. Hyaline membrane disease: the role of ethnicity and maternal risk characteristics. Am J Obstet Oynecol 1993;168:572-6. 5. Hallman M. Antenatal diagnosis of lung maturity. In: Robertson B, Van Golde LMG, Batenburg JJ, editors. Pulmonary surfactant. Amsterdam: Elsevier 1994;425-58. 6. Gluck L, Kulovich MV. Lecithin/sphingomyelin ratios in amniotic fluid in normal and abnormal pregnancy. Am J Obstet Gynecol 1973;115:539^17. 7. Schiff E, Friedman SA, Mercer BM et al. Fetal lung maturity is not accelerated in preectamptic pregnancies. Am J Obstet Oynecol 1993;169:1096-101. 8. Watterberg KL, Demers LM, Scott SM, Murphy S. Chorio-amnionitis and early lung inflammation in infants in whom bronchopulmonary dysplasia develops. Pediatrics 1996;97:210-5. 9. Mailman M. Cytokines, pulmonary surfactant and consequences of intrauterine infection. Biol Neonate 1999;76 (Suppl1):2-9. 10. Arnold C, McLean FH, Kramer MS. Respiratory distress syndrome in second-born versus first-born twins. A matched case-control analysis. N Engl J Med 1995:317:1121-5. 11. Crowley PA. Antenatal corticosteroid therapy: a meta-analysis of the randomized trials, 1972 to 1994. Am J Obstet GynecoM995:173:322-35. 12. Khoury MJ, Calle EE, Joesoef RM. Recurrence of low birth weight in siblings. J Clin Epidemiol 1989:42:1171-8. 13. Raven SN, Misenheimer HR. Respiratory distress syndrome and the high risk mother. Am J Dis Child 1965:109:489-94. 14. Lankenau HM. A genetic and statistical study of the respiratory distress syndrome. Eur J Pediatr 1976:123:167-77. 15. Martin N, Bloomsma D, Machin G. A twin-prolonged attack on complex traits. Nat Genet 1997:17:387-92. 16. Myrianthopoulos NC, Churchill JA, Baszynski AJ. Respiratory distress syndrome in twins. Acta Genet Med Gemellol (Roma) 1971:20:199-204. 17. Ardlie KG, Kruglyak L, Seielstad M. Patterns of linkage disequilibrium in the human genome. Nat Rev Genet 2002;3:299-309. 18. Sham P. Shifting paradigms in gene-mapping methodology for complex traits. Pharmacogenomics 2001:2:195-202. 19. Hafez M, el-Satlab S, Khashaba M, Risk MS, el-Morsy Z, Bassiony MR et al. Evidence of HLA-linked susceptibility gene(s) in respiratory distress syndrome. Dis Markers 1989;7:201-8. 20. Kelly MM, Leigh R, McKenzie R, Kamada D, Ramsdale EH, Hargreave FE. Induced sputum examination: diagnosis of pulmonary involvement in Fabry's disease. Thorax 2000;55:720-1. 21. Crouch E, Wright JR. Surfactant proteins a and d and pulmonary host defense. Annu Rev Physioi 2001 ;63:521-54. 22. Hawgood S, Poulain FR. The pulmonary collectins and surfactant metabolism. Annu Rev Physioi 2001:63:495-519. 23. Haltman M, Merritt TA, Akino T, Bry K. Surfactant protein A, phosphatidylcholine, and surfactant inhibitors in epithelial lining fluid. Correlation with surface activity, severity of respiratory distress syndrome, and outcome in small premature infants. Am Rev Respir Dis 1991; 144:1376-84. 24. Korfhagen TR, Bruno MD, Ross GF, Huelsman KM, Ikegami M, Jobe AH et al. Altered surfactant function and structure in SP-A gene targeted mice. Proc Natl Acad Sci USA 1996;93:9594-9. 25. LeVine AM, Bruno MD, Huelsman KM, Ross GF, Whitsett JA, Korfhagen TR. Surfactant protein A-deficient mice are susceptible to group B streptococcal infection. J Immunol 1997:158:4336-40. 26. Warr RG, Hawgood S, Buckley Dl, Crisp TM, Schilling J, Benson BJ et al. Low molecular weight human pulmonary surfactant protein (SP5): isolation, characterization, and cDNA and amino acid sequences. Proc Natl Acad Sci USA 1987:84:7915-9. 27. Clark JC, Wert SE, Bachurski CJ, Stahlman MT, Stripp BR, Weaver TE et al. Targeted disruption of the surfactant protein B gene disrupts surfactant homeostasis, causing respiratory failure in newborn mice. Proc Natl Acad Sci USA 1995:92:7794-8. 28. tenBrinke A, van Golde L, Batenburg J. Palmitoylation and processing of the lipopeptide surfactant protein C. Biochim Biophys Acta 2002:1583:353-65. 29. Glasser SW, Burhans MS, Korfhagen TR, Na CL, Sly PD, Ross GF et al. Altered stability of pulmonary surfactant in SP-C-deficient mice. Proc Natl Acad Sci USA 2001;98:6366-71. 30. Korfhagen TR, Sheftelyevich V, Burhans MS, Bruno MD, Ross GF, Wert SE et al. Surfactant protein-D regulates surfactant phospholipid homeostasis in vivo. J Biol Chem 1998;273:28438-83. 31. Botas C, Poulain F, Akiyama J, Brown C, Alien L, Goerke J et al. Altered surfactant homeostasis and alveolar type II cell morphology in mice lacking surfactant protein D. Proc Natl Acad Sci USA 1998:95:11869-74. 32. Wert SE, Yoshida M, LeVine AM, Ikegami M, Jones T, Ross GF et al. Increased metalloproteinase activity, oxidant production, and emphysema in surfactant protein D gene-inactivated mice. Proc Natl Acad Sci USA 2000;97:5972-7. 33. Odom MW, Ballard PL. Developmental and hormonal regulation of the surfactant system. In: MacDonald JA, editor. Lung growth and development. New York: Marcel Dekker 1997:495-556. 34. Jobe AH, Ikegami M. Lung development and function in preterm infants in the surfactant treatment era. Annu Rev Physioi 2000;62:825^t6. 35. Pitkanen 0. Lung epithelial ion transport in neonatal lung disease. Biol Neonate 2001;80 (Suppl 1):14-7. 36. Compernolle V, Brusselmans K, Acker T, Hoet P, Tjwa M, Beck H et al. Loss of HIF-2alpha and inhibition of VEGF impair fetal lung maturation, whereas treatment with VEGF prevents fatal respiratory distress in premature mice. Nat Med 2002:8:702-10. 37. Waterer GW, Quasney MW, Cantor RM, Wunderink RG. Septic shock and respiratory failure in community-acquired pneumonia have different TNF polymorphism associations. Am J Respir Cut Care Med 2001; 163:1599-604. 38. DiAngelo S, Lin Z, Wang G, Phillips S, Ramet M, Luo J et al. Novel, non-radioactive, simple and multiplex PCR-cRFLP methods for genotyping human SP-A and SP-D marker alleles. Dis Markers 1999:15:269-81. 39. Ramet M, Haataja R, Marttila R, Hamalainen AM, Knip M, Hallman M. Human surfactant protein—a gene locus for genetic studies in the Finnish population. Dis Markers 2000;16:119-24. 40. Karinch AM, Floros J. 5' splicing and allelic variants of the human pulmonary surfactant protein A genes. Am J Respir Cell Mol BioM 995; 12:77-88. 41. Hoover RR, Floros J. SP-A 3'-UTR is involved in the gtuco-corticoid inhibition of human SP-A gene expression. Am J Physioi 1999; 276: L917-24. 42. Floros J, Veletza SV, Kotikalapudi P, Krizkova L, Karinch AM, Friedman C et al. Dinucleotide repeats in the human surfactant protein-B gene and respiratory-distress syndrome. Biochem J 1995; 305:583-90. 43. Haataja R, Ramet M, Marttila R, Hallman M. Surfactant proteins A and B as interactive genetic determinants of neonatal respiratory distress syndrome. Hum Mol Genet 2000:9:2751-60. 44. Hatzis D, Deiter G, deMello DE, Floros J. Human surfactant protein-C: genetic homogeneity and expression in RDS; comparison with other species. Exp Lung Res 1994:20:57-72. 45. Whitsett JA, Nogee LM, Weaver TE, Horowitz AD. Human surfactant protein: structure, function, regulation and genetic disease. Physiol Rev 1995:75:749-57. 46. Floros J, Lin HM, Garcia A, Salazar MA, Guo X, DiAngelo S et al. Surfactant protein genetic marker alleles identify a subgroup of tuberculosis in a Mexican population. J Infect Dis 2000;182:1473-8. 47. Lahti M, Lofgren J, Marttila R, Renko M, Klaavuniemi T, Haataja R et al. Surfactant protein D gene polymorphism associated with severe respiratory syncytial virus infection. Pediatr Res 2002:51:696-9. 48. Kala P, Ten Have T, Nielsen H, Dunn M, Floros J. Association of pulmonary surfactant protein A (SP-A) gene and respiratory distress syndrome: interaction with SP-B. Pediatr Res 1998:43:169-77. 49. Floros J, Fan R, Matthews A, DiAngelo S, Luo J, Nielsen H et al. Family-based transmission disequilibrium test (TDT) and case-control association studies reveal surfactant protein A (SP-A) susceptibility alleles for respiratory distress syndrome (RDS) and possible race differences. Clin Genet 2001:60:178-87. 50. Floros J, Fan R, DiAngelo S, Guo X, Wert J, Luo J. Surfactant protein (SP) B associations and interactions with SP-A in white and black subjects with respiratory distress syndrome. Pediatr Int 2001:43:567-76. 51. Ramet M, Haataja R, Marttila R, Floros J, Hallman M. Association between the surfactant protein A (SP-A) gene locus and respiratory-distress syndrome in the Finnish population. Am J Hum Genet 2000:66:1569-79. 52. Haataja R, Marttila R, Uimari P, Lofgren J, Ramet M. Respiratory distress syndrome: evaluation of genetic susceptibility and protection by transmission disequilibrium test. Hum Genet 2001:109:351-5. 53. Haataja R. The role of surfactant protein A and B genes in heritable susceptibility to neonatal respiratory distress syndrome. Oulu, Finland: Acta Universitatis Ouluensis 2001 http://herkules.oulu.fi/isbn9514265254/. 54. Veletza SV, Rogan PK, Ten Have T, Olowe SA, Floros J. Racial differences in allelic distribution at the human pulmonary surfactant protein B gene locus (SP-B). Exp lung Res 1996;22:489-94. 55. Marttila R, Haataja R, Ramet M et al. Evaluation of the genetic susceptibility to RDS in monozygotic and dizygotic twins. Pediatr Res 2001 ;49:387A. 56. Marttila R, Haataja R, Ramet M, Lofgren J, Hallman M. Surfactant protein B polymorphism and respiratory distress syndrome in premature twins. Hum Genet 2003:112:18-23. 57. Vayrynen 0, Glumoff V, Hallman M. Regulation of surfactant proteins by LPS and proinflammatory cytokines in fetal and newborn lung. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol 2002;282:L803-10. 58. Wang G, Umstead TM, Phelps DS, Al-Mondhiry H, Floros J. The effect of ozone exposure on the ability of human surfactant protein a variants to stimulate cytokine production. Environ Health Perspect 2002; 110:79-84. 59. Lin Z, Pearson C, Chinchilli V, Pietschmann SM, Luo J, Pison U et al. Polymorphisms of human SP-A, SP-B, and SP-D genes: association of SP-B Thr131lle with ARDS. Clin Genet 2000:58:181-91. 60. Guo X, Lin HM, Lin Z, Montano M, Sansores R, Wang G et al. Polymorphisms of surfactant protein gene A, B, D, and of SP-B-linked microsatellite markers in COPD of a Mexican population. Chest 2000; 117(1 ):249S-50. 61. LeVine AM, Whitsett JA. Pulmonary collectins and innate host defense of the lung. Microbes Infect 2001:3:161-6. 62. Lofgren J, Ramet M, Renko M, Marttila R, Hallman M. Association between surfactant protein A gene locus and severe respiratory syncytial virus infection in infants. J Infect Dis 2002:185:283-9. 63. Paananen R. Characterization of surfactant proteins in porcine Eustachian tube. Oulu, Finland: Acta Universitatis Ouluensis 2001 http://herkules.oulu.fi/isbn9514265254/. 64. Paananen R, Sormunen R, Glumoff V. Surfactant proteins A and D in Eustachian tube epithelium. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol 2001; 281: L660-7. 65. Ramet M, Lofgren J, Alho OP, Hallman M. Surfactant protein-A gene locus associated with recurrent otitis media. J Pediatr 2001; 138:266-8. 66. Nogee LM, de Mello DE, Dehner LP, Colten HR. Brief report: deficiency of pulmonary surfactant protein B in congenital alveolar proteinosis. N Engi J Med 1993:328:406-1024. 67. Nogee LM, Wert SE, Proffit SA, Hull WM, Whitsett JA. Allelic heterogeneity in hereditary surfactant protein B (SP-B) deficiency. Am J Respir Crit Care Med 2000; 161:973-81. 68. Cole FS, Hamvas A, Nogee LM. Genetic disorders of neonatal respiratory function. Pediatr Res 2001 ;50:157-62. 69. Nogee LM, Dunbar AE III, Wert SE, Askin F, Hamvas A, Whitsett JA. A mutation in the surfactant protein C gene associated with familial interstitial lung disease. N Engl J Med 2001:344:573-9. 70. Nogee LM, Dunbar AE III, Wert S, Askin F, Hamvas A, Whitsett JA. Mutations in the surfactant protein C gene associated with interstitial lung disease. Chest 2002;121(Suppl 3):20S-1. 71. Thomas AQ, Lane K, Phillips J III, Prince M, Markin C, Speer M et al. Heterozygosity for a surfactant protein C gene mutation associated with usual interstitial pneumonitis and cellular nonspecific interstitial pneumonitis in one large kindred. Am J Respir Crit Care Med 2002; 165:1322-8. 72. Pelkonen AS, Hakulinen AL, Turpeinen M, Hallman M. Effect of neonatal surfactant therapy on lung function at school age in children born very preterm. Pediatr Pulmonol 1998;25:182-90. 73. Husain AN, Siddiqui NH, Stocker JT. Pathology of arrested acinar development in postsurfactant bronchopulmonary dysplasia. Hum Pathol 1998:29:710-7. 74. Coalson JJ, Winter VT, Siler-Khodr T, Yoder BA. Neonatal chronic lung disease in extremely immature baboons. Am J Respir Crit Care Med 1999; 160:1333^46. 75. Northway WH Jr, Rosan RC, Porter DY. Pulmonary disease following respirator therapy of hyaline-membrane disease. Bronchopulmonary dysplasia. N Engl J Med 1967:276:357-68. 76. Merritt TA, Cochrane CG, Holcomb K, Bohl B, Hallman M, Strayer D et al. Elastase and alpha 1-proteinase inhibitor activity in tracheal aspirates during respiratory distress syndrome. Role of inflammation in the pathogenesis of bronchopulmonary dysplasia. J Clin Investig 1983:72:656-66. 77. Speer CP, Groneck P. Oxygen radicals, cytokines, adhesion molecules and lung injury in neonates. Semin Neonatal 1998:3:219-28. |